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参考文献 1
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参考文献 9
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参考文献 10
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参考文献 17
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参考文献 18
单瑶瑶, 邱秀文, 周桂香, 等. 活性污泥胞外聚合物提取方法比较研究[J]. 九江学院学报(自然科学版), 2016, 33(4): 5-8.
目录 contents

    摘要

    为揭示污水生物脱氮工艺中污泥菌群间的群体感应作用,建立了柱前衍生-固相萃取-高效液相色谱荧光检测法(HPLC-FLD)定量检测介导细菌种间群体感应信号分子AI-2的方法。取反应器的泥水混合液,经0.45 μm滤膜过滤后,用氨基磺酸掩蔽亚硝酸盐干扰,并与2,3-二氨基萘(DAN)发生衍生化反应,衍生化产物用C18固相萃取柱进行固相萃取,经氮吹浓缩后上机分析。采用C18色谱柱(4.6 mm×250 mm,5 μm)进行分离,乙腈与水(含0.1%甲酸)作为流动相进行梯度洗脱,使用荧光检测器(激发和发射波长分别为271 nm和503 nm)进行检测。结果表明,该检测方法在1~200 ng·mL-1范围内呈现出了良好的线性关系,检出限为1 ng·mL-1,回收率为55.08%~59.25%,相对标准误差为2.98%~10.41%。该方法适用于杂质干扰多的痕量信号分子AI-2 定量分析,可为生物脱氮工艺中信号分子AI-2介导群体感应研究提供有效的分析方法。

    Abstract

    To reveal the mechanism of quorum sensing in biological nitrogen removal processes, a method using pre-column derivatization, solid-phase extraction and high-performance liquid chromatography with fluorescence detector (HPLC-FLD) was established for quantitation of AI-2 signal molecules. The samples collected from the reactor and filtered through 0.45 μm filter membrane, then were reacted with amino-sulfonic acid to mask nitrite and derived with 2,3-diaminonaphthalene(DAN). The derived products were extracted and concentrated by solid phase extraction (SPE), and then determined by HPLC (C18 column, 4.6 mm×250 mm, 5 μm) with fluorescence detector (excitation wavelength and emission wavelength were 271 nm and 503 nm, respectively). Gradient elution was carried out by acetonitrile and water (containing 0.1% formic acid) as mobile phases. The results presented an excellent linearity with the concentration ranging from 1 to 200 ng·mL-1, and the detection limits were 1 ng·mL-1. The recovery ratio of sample ranged from 55.08% to 59.25%, with the relative standard deviations of 2.98% to 10.41%, respectively. This method provided an effective analytical method for quantitation of trace signal molecule AI-2 in biological nitrogen removal processes.

    群体感应(quorum sensing,QS)是指细菌之间能够分泌自诱导物(autoinducer)作为化学信号分子,实现细菌种内及种间交[1]。通过感应周边信号分子浓度,细菌可以感知周边细菌密度,从而诱导特定基因的表达,并触发一系列生物群体行为,如生物膜的形成、致病基因的表达、生物发光[2,3]。目前,群体感应系统中细菌分泌的信号分子主要有3类:革兰氏阴性菌分泌的高丝氨酸内酯类(acyl-homoserine lactones,AHLs);革兰氏阳性菌分泌的寡肽类(autoinducer peptide,AIP);细菌种间分泌的第2类自诱导物(autoinducer-2,AI-2)[4]。TAN[5]在好氧颗粒污泥系统内检测到信号分子AHLs的存在,并指出微生物群体感应与好氧颗粒污泥的形成有关;DE[6]在OLAND反应器(一体式亚硝化-厌氧氨氧化反应器)中证实了信号分子AHLs的存在;XIONG[7]的研究表明,信号分子AI-2对好氧颗粒污泥的颗粒化具有促进作用。有研究表明,AI-2介导的群体感应广泛存在于革兰氏阳性和阴性细菌中,被认为是微生物群体感应的通用语[8]。因此,对AI-2介导的群体感应系统的研究显得十分必要。

    有研[9,10]显示,在污水生物处理工艺中,微生物菌群间存在AI-2介导的群体感应现象,比如生物膜(颗粒污泥)的形成、处理效果的迅速提升等。但由于实际水样中AI-2浓度极低,且杂质干扰较多,对实际水样中AI-2浓度进行定量检测有一定的难度,制约了污水生物处理工艺中AI-2介导群体感应的研究。

    目前,对AI-2定量检测的方法主要有4类。第1类是哈氏弧菌(Vibrio harveyi)生物发光[11]。该方法最为常用,但只能对AI-2进行定性检测,不能用于定量检测,且检测结果容易受pH、葡萄糖及硼的干[12,13]。第2类是基于AI-2与受体蛋白结合后荧光检测法。该方法需要提纯和标记受体蛋白,步骤复杂、耗时且价格昂[14]。第3类是将4,5-二羟基-2,3-戊二酮(4,5-dihydroxy-2,3-pentanedione,DPD)与1,2-苯二胺(1,2-phenylenediamine)或其衍生物进行反应,利用HPLC-MS/MS或GC-MS对其形成相应的喹喔啉进行检测。该方法操作复杂,且需要配备价格昂贵的HPLC-MS/MS大型仪器设[15,16]。第4类是SONG[17]报道的将4,5-二羟基-2,3-戊二酮(4,5-dihydroxy-2,3-pentanedione,DPD)与2,3-二氨基萘(DAN)发生衍生化反应,生成具有特征激发和发射波长的荧光物质,利用HPLC-FLD对该衍生化产物进行检测,该方法具有操作简单、价格低廉、灵敏精准、检出限低、线性定量分析范围较宽的优点,但该方法对实际样品中AI-2检测的适用性还有待进一步研究。

    本研究在SONG[17]报道方法的基础上,优化建立了柱前衍生-固相萃取-高效液相色谱荧光检测法,实现了对生物脱氮工艺中痕量AI-2的定量检测,为探究AI-2介导的群体感应系统在污水生物脱氮菌群中的调控作用提供了有效的分析方法。

  • 1 材料与方法

    1
  • 1.1 实验原料

    1.1

    DPD溶液(4.47 mmol·L-1)购自Omm Scientific公司(Texas,USA),用超纯水溶解,配制成1 mg·mL-1标准储备液,置于-80 ℃储存备用,1~200 ng·mL-1的DPD使用液由标准储备液经稀释后获得。2,3-二氨基萘(DAN,麦克林公司)用0.1 mol·L-1盐酸溶解,配制成400 mg·L-1的DAN溶液,经0.45 μm滤膜过滤后,置于4 ℃下避光保存。氨基磺酸、甲酸、乙腈(色谱纯)购自Sigma-Aldrich公司。氨基磺酸用超纯水溶解,配制成80 g·L-1的掩蔽液,于4 ℃储存备用。

  • 1.2 实验装置

    1.2

    高效液相色谱仪(HPLC-FLD,Agilent 1260,安捷伦);全自动固相萃取仪(Fotector-02HT,睿科);全自动氮吹浓缩仪(N1-50,屹尧)。

  • 1.3 衍生化

    1.3

    取200 mL实验室生物脱氮反应器(分别为5 L UASB反应器、1 L UASB反应器、SBR及IFAS反应器)水样,经0.45 μm滤膜过滤后,加入1.2 mL盐酸(1 mol·L-1),调节pH至3以下。加入6.5 mL氨基磺酸(80 g·L-1),摇匀反应10 min。再将1.25 mL DAN溶液(400 mg·L-1)加入至上述水样中,振荡摇匀,并置于90 ℃水浴中反应40 min。

  • 1.4 固相萃取

    1.4

    依次采用6 mL甲醇和 6 mL超纯水对C18固相萃取柱进行活化与平衡,控制滤速为3 mL·min-1。随后加入前述衍生化水样,控制滤速为1 mL·min-1。采用 6 mL甲醇(5%,体积比)进行冲洗,控制滤速为3 mL·min-1;干燥2 min,加入5 mL乙腈进行洗脱,控制滤速为1 mL·min-1。利用氮吹仪在30 ℃条件下将洗脱液浓缩至0.5 mL以下,加入0.5 mL超纯水,并用乙腈定容至1 mL,转移至色谱进样瓶,用于高效液相色谱分析。

  • 1.5 色谱条件

    1.5

    高效液相色谱采用配备荧光检测器的Agilent 1260,色谱柱为Eclipse XDB-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm),柱温30 ℃,流动相使用含有0.1%甲酸和乙腈,流速0.8 mL·min-1;梯度洗脱程序见表1。进样量为20 μL;荧光检测器的激发和发射波长分别设定为271 nm和503 nm。

    表1 液相色谱梯度洗脱程序

    Table 1 Gradient elution program of HPLC

    时间/min溶剂A(0.1%甲酸)/%溶剂B(乙腈)/%
    07030
    47030
    123565
    203565
    247030
    277030
  • 1.6 胞外聚合物(EPS)的测定

    1.6

    污泥中胞外聚合物(EPS)的提取采用NaOH[18]。提取得到的EPS总量以总有机碳(TOC)表征,采用TOC分析仪(TOC-L,岛津)测定。

  • 2 结果与讨论

    2
  • 2.1 衍生化反应优化

    2.1

    采用HPLC-FLD检测方法对DPD标准液(10 ng·mL-1)及实验室生物脱氮反应器水样进行了分析,结果如图1所示。对于10 ng·mL-1 DPD标准液,其与DAN衍生化产物的信号峰不明显,且DAN峰溢出检测器的检测范围,导致DAN峰不完整。这是由于检测样品中DPD浓度较低,使得衍生化后体系中还存在着大量未参与衍生化反应的DAN。另外,在实际水样中,信号峰和DAN峰强度均较低,而保留时间11.8 min出现强干扰峰,由于NO2-的存在,与衍生剂DAN反应生成荧光物质(NAT),干扰了正常的衍生化反应(化学反应式如式(1)所示)。因此,AI-2 HPLC-FLD检测方法不适用于干扰杂质多、浓度低的实际样品分析,需要进行优化。

    /html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F001.jpg
    (1)
    图1
                            优化前10 ng·mL-1 DPD标准液和实际水样的色谱图

    图1 优化前10 ng·mL-1 DPD标准液和实际水样的色谱图

    Fig.1 Chromatogram of 10 ng·mL-1 DPD standard liquid before optimizing and water sample

  • 针对剩余衍生剂DAN过多造成DAN峰不完整的情况,对DPD与DAN衍生化反应进行了优化,将500 ng·mL-1的DPD标准溶液分别与4个不同浓度(100、50、25、2.5 mg·L-1)的DAN溶液进行衍生化反应,结果如图2所示。S1和S2样品中 DAN峰依旧过强,表明DPD与DAN的反应比例过小;而S4样品中DAN的峰面积过小,无法保证体系中的DPD能完全反应;S3样品的结果最理想。因此,S3样品中DPD与DAN的反应比例,即浓度比1∶50,为衍生化反应的最佳比例。

    图2
                            不同DPD与DAN反应比例的色谱图

    图2 不同DPD与DAN反应比例的色谱图

    Fig.2 Chromatogram of DPD reacted with different proportion of DAN

    注:S1、S2、S3、S4中DPD浓度均为500 ng·mL-1,DAN浓度分别为100、50、25、2.5 mg·L-1

  • 2.2 掩蔽剂及其用量的确定

    2.2

    针对实际水样中NO2-的干扰,需要在衍生化反应之前,对NO2-进行掩蔽。本实验选用氨基磺酸作为NO2-的掩蔽剂(化学反应式如式(2)所示),并对掩蔽剂的加入量进行了优化。将1 000 ng·mL-1的DPD标准溶液与200 mg·L-1 NO2-溶液混合作为水样,分别与4个不同浓度(0、2、10、20 g·L-1)的氨基磺酸溶液发生掩蔽反应,再与25 mg·L-1的DAN溶液进行衍生化反应。对不同浓度掩蔽剂下,DAN及DPD衍生化产物峰面积的大小进行比较。

    N O 2 - + H 3 N S O 3 H + S O 4 2 - + N 2 + H 2 O
    (2)

    如图3所示,Y1样品(氨基磺酸的加入量为0 g·L-1)的色谱图只在11 min左右出现了一个峰,表明水样在未对NO2-进行掩蔽的情况下,所有的DAN都与 N O 2 - 发生了反应。而在加入掩蔽剂对 N O 2 - 进行掩蔽的情况下,Y2、Y3、Y4样品的色谱图在5 min及8 min前后均出现了峰形完整的峰,表明Y2、Y3、Y4样品体系中 N O 2 - 的干扰得到了掩蔽。相较于Y2样品,Y3样品检测出的亚硝酸盐与DAN的反应产物的量更少,Y4与Y3样品检测出的亚硝酸盐与DAN的反应产物的量相差不大,但Y3样品中所加入的掩蔽剂的量更少。综上所述,Y3样品中氨基磺酸的用量(10 g·L-1)最佳,起到的掩蔽效果最好。

    图3
                            不同掩蔽剂加入量的色谱图

    图3 不同掩蔽剂加入量的色谱图

    Fig.3 Chromatogram of sample with different masking agent addition

    注:Y1、Y2、Y3、Y4中掩蔽剂氨基磺酸的加入量分别为0、2、10、20 g·L-1

  • 2.3 固相萃取与色谱条件优化

    2.3

    经过上述优化,能够对AI-2浓度高于1 ng·mL-1的样品进行定量分析,但对于浓度低于1 ng·mL-1的样品仍不能有效检出。因此,需要对衍生化后水样进行固相萃取富集浓缩,提高检测的灵敏度。对于富集过程中某些干扰物,如腐殖酸的杂峰干扰,可通过调整液相色谱仪的PMT增益值予以消除(图4)。经过固相萃取和色谱条件优化后,本方法能够准确测定实际水样中痕量AI-2浓度。

    图4
                            固相萃取与色谱条件优化后色谱图

    图4 固相萃取与色谱条件优化后色谱图

    Fig.4 Chromatogram of samples after SPE and operating conditions optimization

  • 2.4 线性关系与检出限

    2.4

    配制6个浓度梯度(0、1、10、50、100、200 ng·mL-1)的DPD标准溶液进行衍生化反应和上机分析。以信号峰(保留时间为 9 min)峰面积为横坐标,DPD浓度为纵坐标,绘制标准曲线(如图5所示)。结果表明,在1~200 ng·mL-1范围内,浓度与其对应的信号峰峰面积有较好的线性关系,回归系数R2=0.999 1,检出限为1 ng·mL-1

    图5
                            DPD标准溶液(0~200 ng·mL-1)色谱图与DPD标准曲线

    图5 DPD标准溶液(0~200 ng·mL-1)色谱图与DPD标准曲线

    Fig.5 Chromatogram of DPD standard solution(0~200 ng·mL-1)and standard curve of DPD

  • 2.5 方法的准确度和精密度

    2.5

    为了确定本方法的准确度和精密度,分别向纯水和实际水样(厌氧氨氧化反应器出水)中添加0.1、0.5、1 ng·mL-1的DPD标准溶液,对低、中、高3个加标水平进行平行测量3次,并根据峰面积计算回收率,如表2所示。可以看出,信号分子AI-2的平均加标回收率为55.08%~59.25%,相对标准偏差为2.98%~10.41%,表明该方法的准确度及精密度较高,测试结果较可靠。

    表2 加标回收率与相对标准偏差

    Table 2 Recovery and relative standard deviation

    加标样品加标0.1 ng·mL-1溶液加标0.5 ng·mL-1溶液加标1 ng·mL-1溶液
    回收率/%相对标准偏差/%回收率/%相对标准偏差/%回收率/%相对标准偏差/%
    纯水64.332.3267.284.0965.162.97
    实际水样55.085.7459.2510.4156.962.98
  • 2.6 生物脱氮工艺中AI-2分析

    2.6

    利用前述所建立的柱前衍生-固相萃取-高效液相色谱荧光检测法对稳定运行的4个生物脱氮反应器(5 L的UASB反应器、1 L的UASB反应器、SBR及IFAS反应器)中的信号分子AI-2的浓度进行了检测,结果如图6所示。4个反应器的出水中均含有不同浓度的信号分子AI-2,且颗粒污泥中信号分子AI-2的浓度(0.97 ng·mL-1)要明显高于絮体污泥(0.15 ng·mL-1)。由此表明,信号分子AI-2介导的群体感应系统广泛存在于生物脱氮工艺中,且AI-2浓度与反应器中污泥的形态有关。信号分子AI-2能够促进菌群之间的交流,分泌胞外聚合物(EPS),促使细菌细胞吸附聚集生长,进而促进污泥颗粒化。

    图6
                            不同生物脱氮反应器中信号分子AI-2及胞外聚合物(EPS)浓度

    图6 不同生物脱氮反应器中信号分子AI-2及胞外聚合物(EPS)浓度

    Fig.6 Concentration of AI-2 and EPS in different types of biological reactors

    注:UASB5 L、UASB1 L、SBR、IFAS分别表示5 L UASB反应器、1 L UASB反应器、SBR及IFAS反应器。

  • 3 结论

    3

    1) 建立了测定实际水样中痕量信号分子AI-2的柱前衍生-固相萃取-高效液相色谱荧光检测法。通过对检测条件的优化,能够避免NO2-对方法的干扰,实现准确高效地对实际水样中痕量AI-2进行定量检测。

    2) 利用该方法对稳定运行的4个生物脱氮反应器出水中的AI-2浓度进行了检测,证明了生物脱氮工艺中信号分子AI-2介导的群体感应系统的存在,为今后污水生物处理工艺中AI-2介导群体感应的研究提供了有效分析方法。

  • 参 考 文 献

    • 1

      MILLER M B, BASSLER B L. Quorum sensing in bacteria[J]. Annual Review of Microbiology, 2001, 55(1): 165-199.

    • 2

      叶姜瑜, 谭旋, 吕冰, 等. 细菌群体感应现象及其在控制膜生物污染中的应用[J]. 环境工程, 2013, 31(S1): 196-199.

    • 3

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    • 4

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    • 5

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黄晓遇

机 构:广州大学土木工程学院,广州510006

Affiliation:School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

角 色:第一作者

Role:First author

邮 箱:2765570340@qq.com

第一作者简介:黄晓遇(1996— ),男,本科生。研究方向:生物脱氮。E-mail:2765570340@qq.com

谭炳琰

机 构:广州大学土木工程学院,广州510006

Affiliation:School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

李淳峰

机 构:广州大学土木工程学院,广州510006

Affiliation:School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

陈雨佳

机 构:广州大学土木工程学院,广州510006

Affiliation:School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

韦童

机 构:广州大学土木工程学院,广州510006

Affiliation:School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

荣宏伟

机 构:

1. 广州大学土木工程学院,广州510006

2. 广东省水质安全及污染控制工程技术研究中心,广州510006

Affiliation:

1. School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

2. Guangdong Engineering Research Center for Water Quality Safety and Pollution Control, Guangzhou 510006, China

储昭瑞

机 构:

1. 广州大学土木工程学院,广州510006

2. 广东省水质安全及污染控制工程技术研究中心,广州510006

Affiliation:

1. School of Civil Engineering, Guangzhou University, Guangzhou 510006, China

2. Guangdong Engineering Research Center for Water Quality Safety and Pollution Control, Guangzhou 510006, China

角 色:通讯作者

Role:Corresponding author

邮 箱:zrchu@gzhu.edu.cnzrchu@gzhu.edu.cn

作者简介:储昭瑞(1987— ),男,博士,讲师。研究方向:水处理理论与技术。E-mail:zrchu@gzhu.edu.cn

金曙光,郑晓梅,张利田

角 色:中文编辑

Role:Editor

时间/min溶剂A(0.1%甲酸)/%溶剂B(乙腈)/%
07030
47030
123565
203565
247030
277030
/html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F002.jpg
/html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F003.jpg
/html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F004.jpg
/html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F005.jpg
/html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F006.jpg
加标样品加标0.1 ng·mL-1溶液加标0.5 ng·mL-1溶液加标1 ng·mL-1溶液
回收率/%相对标准偏差/%回收率/%相对标准偏差/%回收率/%相对标准偏差/%
纯水64.332.3267.284.0965.162.97
实际水样55.085.7459.2510.4156.962.98
/html/teepc_cn/201808042/alternativeImage/587c9f56-5b79-4e3f-908b-115ebc7269b0-F007.jpg

表1 液相色谱梯度洗脱程序

Table 1 Gradient elution program of HPLC

图1 优化前10 ng·mL-1 DPD标准液和实际水样的色谱图

Fig.1 Chromatogram of 10 ng·mL-1 DPD standard liquid before optimizing and water sample

图2 不同DPD与DAN反应比例的色谱图

Fig.2 Chromatogram of DPD reacted with different proportion of DAN

图3 不同掩蔽剂加入量的色谱图

Fig.3 Chromatogram of sample with

图4 固相萃取与色谱条件优化后色谱图

Fig.4 Chromatogram of samples after SPE and operating conditions optimization

图5 DPD标准溶液(0~200 ng·mL-1)色谱图与DPD标准曲线

Fig.5 Chromatogram of DPD standard solution(0~200 ng·mL-1)and standard curve of DPD

表2 加标回收率与相对标准偏差

Table 2 Recovery and relative standard deviation

图6 不同生物脱氮反应器中信号分子AI-2及胞外聚合物(EPS)浓度

Fig.6 Concentration of AI-2 and EPS in different types of biological reactors

image /

无注解

无注解

S1、S2、S3、S4中DPD浓度均为500 ng·mL-1,DAN浓度分别为100、50、25、2.5 mg·L-1

Y1、Y2、Y3、Y4中掩蔽剂氨基磺酸的加入量分别为0、2、10、20 g·L-1

different masking agent addition

无注解

无注解

无注解

UASB5 L、UASB1 L、SBR、IFAS分别表示5 L UASB反应器、1 L UASB反应器、SBR及IFAS反应器。

  • 参 考 文 献

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